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糖原染色试剂盒图片
产品货号:
KFS107
中文名称:
糖原染色试剂盒
英文名称:
产品规格:
4×50ml|4×100ml
发货周期:
1~3天
产品价格:
询价
本试剂盒采用特有配方技术,大大增强了糖原染色效果,性能稳定,特异性强,操作简捷。


糖原染色是病理学中常规的染色方法之一,McManus在1964年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白,该法常用来显示糖原和其他多糖,该染色试剂盒不仅能够显示糖原,还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂,它能氧化糖类及有关物质中1,2-乙二醇基,使之变为二醛,醛与schiff试剂能结合成一种品红化合物,产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质,使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间,使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化,这是很关键的步骤。


组分4×50mL4×100mL保存
试剂(A):过碘酸溶液50mL100mL4℃,避光
试剂(B):Schiff Reagent50mL100mL4℃,避光
试剂(C):苏木素染色液50mL100mLRT,避光
试剂(D)酸性乙醇分化液50mL100mLRT

保存:2~8℃,避光,有效期6个月。


  1. 10%福尔马林固定液
  2. 蒸馏水
  3. 系列乙醇



  1. 切片脱蜡应尽量干净,否则影响染色效果。
  2. 过碘酸氧化时间不宜过久,氧化时的温度以18~22℃最佳。
  3. 过碘酸溶液和Schiff Reagent应置于4℃密闭保存,使用时避免接触过多阳光和空气。使用前,最好提前30min取出恢复到在室温,避光暗处使用。
  4. 酸性乙醇分化液应经常更换新液,其分化时间应该根据切片厚薄,组织的类别和分化液的新旧而定,另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
  5. 在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要,该根据切片厚薄,组织的类别等决定。
  6. 本染色液常用于常规组织切片染色。
  7. 冷冻切片染色时间尽量要短。



  1. 常规固定,常采用10%福尔马林,常规脱水包埋。
  2. 石蜡切片脱蜡入蒸馏水;冰冻切片直接入蒸馏水。
  3. 自来水冲洗2~3min,再用蒸馏水浸洗2次。
  4. 入过碘酸溶液,室温放置5~8min,一般不宜超过10min。
  5. 自来水冲洗1次,再用蒸馏水浸洗2次。
  6. 入Schiff Reagent,置于室温阴暗处浸染10~20min。
  7. 自来水冲洗10min。
  8. 入苏木素染色液,染细胞核1~2min。
  9. 酸性乙醇分化液分化2-5s。
  10. 自来水冲洗10~15min,更换蒸馏水清洗,使其返蓝。
  11. 逐级常规乙醇脱水。二甲苯透明,中性树胶封固。



反应阳性物质红色或紫红色
细胞核蓝色
细胞质深浅不一的红色
注:颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。


  1. 取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3)100mL,处理30~60min,与其他切片共同入过碘酸溶液。结果为阴性。
  2. (备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30~60min,与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
  3. (备选方案)如果对照片采用其自身样本,对照片不经过碘酸溶液这一步,直接入Schiff Reagent。结果应为阴性。

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